شناسایی فیتوشیمیایی و ارزیابی آلاینده‌ها در محصولات فرآوری شده مورینگا اولیفرا تولید شده به‌صورت ارگانیک از ساحل نیجر

نوع مقاله : مقاله پژوهشی انگلیسی

نویسندگان

ماسوئودو مهامانه ¹

اسیوفو آمادو ²

ژیانگ رانگ چنگ ³

¹ دانشکده تحصیلات تکمیلی (SISE)، دانشگاه مرادی، نیجر

² گروه تولید محصولات کشاورزی، دانشکده علوم زراعی و محیطی، دانشگاه مرادی، نیجر، دان دیکو دانکولودو

³ دانشکده علوم و صنایع غذایی، دانشگاه جیانگنان، ووشی، چین

https://doi.org/10.22067/ifstrj.2026.96126.1498

چکیده

در ساحل نیجر، فرآوری مورینگا اولیفرا یک فرصت اقتصادی ارزشمند برای جوامع محلی ارائه می‌دهد؛ با این حال، کیفیت و ایمنی محصول ارتباط نزدیکی با روش‌های فرآوری مورد استفاده دارد. این مطالعه با استفاده از آنالیز GC-MS، ترکیب فیتوشیمیایی و نشانگرهای آلودگی عصاره‌های برگ مورینگا (MLE) و روغن دانه مورینگا (MSO) را بررسی کرد. نتایج، تأثیر قابل توجه فرآوری بر پروفایل‌های شیمیایی را نشان داد. اسیدهای چرب در ترکیبات غالب بودند. MLE  (32.93 %) خشک‌شده در اتاق غنی از استرها (39.9%) و ترپن‌ها (18.84%) بود، در حالی‌که نمونه‌های خشک‌شده در آفتاب، محتوای آلدهید بالایی (25.3%) نشان دادند که نشان‌دهنده اکسیداسیون لیپید است. عصاره‌های خشک‌شده در آفتاب به‌طور منحصر به فردی حاوی N،N-دی‌متیل‌تریپتامین و فنیل‌کینونین بودند که نشان‌دهنده وجود متابولیت‌های القا شده فتوشیمیایی است. در MSO، اسیدهای چرب غالب بودند (72.76%) و شرایط استخراج بر پایداری ترکیبات زیست‌فعال تأثیر گذاشت. استخراج سرد، مولکول‌های حساس به حرارت مانند اسکوالن (0.29%) را حفظ کرد که در نمونه‌های تیمار شده با حرارت وجود نداشتند. نشانگرهای آلودگی نیز شناسایی شدند، از جمله دی-ان-اکتیل فتالات (1.68%) در MLE خشک شده در اتاق و 2-دی متیل آمینو اتیل متاکریلات (2%) در عصاره‌های خشک شده در خشک‌کن خورشیدی. آلاینده‌های صنعتی، مانند 10-آندسنوئیل کلرید (3.68%) و 13-اوکسابی‌سیکلو [10.1.0] تری‌دکان (5.85%)، در MSO کنترل شناسایی شدند. به‌طور کلی، پروفایل GC-MS نشان داد که هر روش پردازش، اثر انگشت فیتوشیمیایی متمایزی با پیامدهای تغذیه‌ای، دارویی و ایمنی خاص ارائه می‌دهد. این یافته‌ها بر نیاز به بهینه‌سازی فرایندها و بسته‌بندی برای افزایش کیفیت و ارزش بازار محصولات مبتنی بر مورینگا در ساحل تأکید می‌کند.

کلیدواژه‌ها

آلودگی

ساحل

فرآوری

کروماتوگرافی

موضوعات

• فناوری مواد غذایی

---

عنوان مقاله English

Phytochemical Characterization and Evaluation of Contaminants in the Processed Products of Organically Produced Moringa oleifera from the Niger Sahel

نویسندگان English

Massaoudou Mahamane ¹

Issoufou Amadou ²

Xiang-Rong Cheng ³

¹ School of Post Graduate (SISE), Dan Dicko Dankoulodo University of Maradi, Niger

² Department of Crop Production, Faculty of Agronomy and Environmental Sciences. Dan Dicko Dankoulodo University of Maradi, Niger

³ School of Food Science and Technology, Jiangnan University, Wuxi, China

چکیده English

In the Nigerien Sahel, Moringa oleifera processing presents a valuable economic opportunity for local communities; however, product quality and safety are closely linked to the processing methods employed. This study investigated the phytochemical composition and contamination markers of Moringa leaf extracts (MLE) and Moringa seed oil (MSO) using GC–MS analysis. The results demonstrated a significant influence of processing on chemical profiles. Fatty acids dominated the compositions (32.93%). Room-dried MLE was enriched in esters (39.9%) and terpenes (18.84%), while solar-dried samples showed elevated aldehyde content (25.3%), reflecting lipid oxidation. Sun-dried extracts uniquely contained N,N-dimethyltryptamine and phenylquinonine, indicating the presence of photochemically induced metabolites. In MSO, fatty acids were predominant (72.76%), and extraction conditions affected the stability of bioactive compounds. Cold extraction preserved thermolabile molecules such as squalene (0.29%), which were absent from heat-treated samples. Contamination markers were also identified, including di-n-octyl phthalate (1.68%) in room-dried MLE and 2-dimethylaminoethyl methacrylate (2%) in Solar dryer-dried extracts. Industrial contaminants, such as 10-undecenoyl chloride (3.68%) and 13-oxabicyclo[10.1.0]tridecane (5.85%), were detected in the control MSO. Overall, GC–MS profiling revealed that each processing method yields a distinct phytochemical fingerprint with specific nutritional, pharmacological, and safety implications. These findings highlight the need for optimized processing and packaging strategies to enhance the quality and market value of Moringa-based products in the Sahel.

کلیدواژه‌ها English

Chromatography

Infestation

Processing

Sahel

Authors retain the copyright. This is an open access article distributed under Creative Commons Attribution 4.0 International License (CC BY 4.0)

مراجع

1. Adeyeye, E.I., Ibigbami, O.A., Akinsola, A.F., Akinwumi, O.A., Adubiaro, H.O., & Adesina, A.J. (2020). Assessment of pesticides residues in Moringa oleiferaIndian Journal of Public Health Research & Development, 11(8), 261. https://doi.org/10.37506/ijphrd.v11i8.10932
2. Al-Maqtari, M.A., Al-Maydama, H., Bahadi, M., & Barfed, H. (2024). Extraction and comparative evaluation on the physicochemical characteristics of Yemeni Moringa oleifera seeds oil. Sana'a University Journal, 2(1), 83–95. https://doi.org/10.59628/jast.v2i1.789
3. Anwar, F., Latif, S., Ashraf, M., & Gilani, A.H. (2007). Moringa oleifera: A food plant with multiple medicinal uses. Phytotherapy Research, 21(1), 17-25. https://doi.org/10.1002/ptr.2023
4. Ayseli, M.T., & Ayseli, Y.İ. (2020). Volatile profiling and fingerprinting of Moringa oleifera leaves by headspace solid-phase microextraction coupled with gas chromatography-mass spectrometry (HS-SPME/GC-MS). Journal of Essential Oil Research, 32(5), 406-417. https://doi.org/10.17504/protocols.io.81wgbwp9ngpk/v1
5. Bamisaye, V.J., Olasebikan, Y.O., Asebioge, O.O., & Samson, E.A. (2025). Effects of drying methods on phytochemical and antioxidant properties of Ocimum gratissimum (Lam.) leaves. CABI Agriculture and Bioscience, 6(1), 0052. https://doi.org/10.1079/ab.2025.0052
6. Bhalla, N., Ingle, N., Patri, S.V., & Haranath, D. (2021). Phytochemical analysis of Moringa oleifera leaves extracts by GC-MS and free radical scavenging potency for industrial applications. Saudi Journal of Biological Sciences, 28(12), 6915–6928. https://doi.org/10.1016/j.sjbs.2021.07.075
7. Chong, C.H., Dibagar, N., Maulion, R., & Figiel, A. (2023). Drying characteristics of herbs, spices, and medicinal plants. Drying of Herbs, Spices, and Medicinal Plants, 29–52. https://doi.org/10.1201/9781003269250-3
8. Chukwu, O.O., Iyare, C.O., Emelike, C.U., Ezimah, A.C.U., Asogwa, N.T., & Konyefom, N.G. (2024). GC-MS analysis of Moringa oleifera leaf extract and effects of administration on histology of reproductive organs and liver of female rats exposed to chronic unpredictable stress. Journal of Ethnopharmacology, 332, 118345. https://doi.org/10.1016/j.focha.2024.100661
9. Codex (2024). General standard for contaminants and toxins in food and feed. (CXS 193-1995). In Codex Alimentarius Commission Procedure Manual, 29th edition. Rome: FAO/WHO. https://doi.org/10.19103/as.2025.172.06
10. Djeneba, C., Dembélé, Y., Touré, O., & Iknane, A. (2023). Caractérisation et composition biochimique et nutritionnelle du Moringa oleifera récolté dans le district de Bamako, Mali en 2020. Mali Santé Publique, 5–13. https://doi.org/10.53318/msp.v12i01.2416
11. Eddin, L.B., Jha, N.K., Goyal, S.N., Agrawal, Y.O., Subramanya, S.B., Bastaki, S.M.A., & Ojha, S. (2022). Health benefits, pharmacological effects, molecular mechanisms, and therapeutic potential of α-bisabolol. Nutrients, 14(7), 1370. https://doi.org/10.3390/nu14071370
12. El Bilali, H., Dan Guimbo, I., Nanema, R.K., Falalou, H., Kiebre, Z., Rokka, V.M., ... & Acasto, F. (2024). Research on moringa (Moringa oleifera) in Africa. Plants, 13(12), 1613. https://doi.org/10.3390/plants13121613
13. Halket, M., Waterman, D., Przyborowska, A.M., Patel, R.K.P., Fraser, P.D., & Bramley, P.M. (2004). Chemical derivatization and mass spectral libraries in metabolic profiling by GC/MS and LC/MS/MS. Journal of Experimental Botany, 56(410), 219–243. https://doi.org/10.1093/jxb/eri069
14. Hassoumi, D. (2017). Moringa oléfera un outil de développement local : cas de la commune rurale de Liboré. Revue des Etudes Multidsciplinaires en Sciences Economiques et Sociales, 2(2), 55-68. https://doi.org/10.48375/IMIST.PRSM/remses-v2i2.7786
15. Kelly, G.S. (1999). Squalene and its potential clinical uses. Alternative Medicine Review, 4(1), 29-36. https://doi.org/10.1080/13590840050000954
16. Kind, T., & Fiehn, O. (2007). Seven golden rules for heuristic filtering of molecular formulas obtained by accurate mass spectrometry. BMC Bioinformatics, 8(105), 1-20. https://doi.org/10.1186/1471-2105-8-105
17. Konmy, B.B.S., Olounladé, P.A., Doko-Allou, S., & Azando, E.V.B. (2020). Evaluation of the activity of powder of leaves of Moringa oleifera on gastro intestinal parasites of the domestic rabbit (Oryctolagus cuniculus) in Southern Benin. European Scientific Journal, 16(30), 52. https://doi.org/10.19044/esj.2020.v16n30p51
18. Latla, S. (2020). Etude des fractions Lipidiques et Protéiques des extraits de quatre parties de Moringa Oleifera L (Feuilles, Fleurs, Gousses et Graines) Cultivée à Metlili (Ghardaïa) (Doctoral dissertation). dspace.univ-ghardaia.edu.dzdspace.univ-ghardaia.edu.dz
19. Li, A., Liu, C., Kang, L., Liu, K., & Wang, X. (2022). Chamber study on the migration of di-n-octyl phthalate (DNOP) between source surfaces and settled dust: Influence of temperature and dust loading. Atmospheric Environment, 268, 118789. https://doi.org/10.1016/j.atmosenv.2021.118789
20. Luoh, J.W., Sheu, A., Wu, W.J., & Yang, R.Y. (2015). Phytonutrient values of Moringa oleifera In International Symposium on Moringa, 1158, 341-348. https://doi.org/10.17660/actahortic.2017.1158.38 
21. Mahamane, M., Amadou, I., & Moussa, M.R. (2025). Technical process and economic analyses of organic Moringa oleifera production in the Sahel region of Niger. Journal of Food Research, 14(2), 24. https://doi.org/10.5539/jfr.v14n2p24
22. Mahamane, M., Laminou, M.O., Amadou, I., & Hamadou, H.A. (2024). Effects of organic fertilization model on the growth of two Moringa oleifera Cultivars. Journal of Applied Biosciences, 197, 20826-20837. https://doi.org/10.35759/JABs.197.3
23. Moneim, S.A. (2024). Effect of moringa (Moringa oleifera) seed oil extraction methods on its physicochemical properties. Sabrao Journal of Breeding and Genetics, 56(5), 2143–2151. https://doi.org/10.1016/j.phyplu.2025.100762
24. Nakra, S., Tripathy, S., & Srivastav, P.P. (2024). Drying as a preservation strategy for medicinal plants: Physicochemical and functional outcomes for food and human health. Food Chemistry Advances, 4, https://doi.org/10.1016/j.focha.2024.100727
25. Ndong, M., Wade, S., Dossou, N., Guiro, A.T., & Gning, R.D. (2007). Valeur nutritionnelle du Moringa oleifera, Etude de la biodisponibilite du Fer, effet de L’ Enrichissement de divers plats traditionnels Sénégalais avec la poudre des feuilles. African Journal of Food, Agriculture, Nutrition and Développent, 7(3), 1-17. https://doi.org/10.18697/ajfand.14.IPGRI1-8
26. Outani, B.A., Adamou, H., Mahamadou, A., & Delmas, P. (2023). Moringa (Moringa oleifera Lam): A Review on its importance worldwide. East African Scholars Journal of Agriculture and Life Sciences, 6(07), 112–120. https://doi.org/10.36349/easjals.2023.v06i07.01
27. Peixoto, M.G., Costa-Júnior, L.M., Blank, A.F., da Silva Lima, A., Menezes, T.S.A., de Alexandria Santos, D., Alves, P.B., de Holanda Cavalcanti, S.C., Bacci, L., & de Fátima Arrigoni-Blank, M. (2015). Acaricidal activity of essential oils from Lippia alba genotypes and its major components carvone, limonene, and citral against Rhipicephalus microplus. Veterinary Parasitology, 210(1-2), 118-122. https://doi.org/10.1016/j.vetpar.2015.03.010
28. Tamilselvi, N.A., & Arumugam, T. (2019). Health benefits, therapeutic and pharmacological properties of moringa- A Review. Journal of Pharmaceutical Research International, 25(1), 1–11. https://doi.org/10.9734/jpri/2018/37179
29. Uzair, Z. (2021). Physicochemical analysis and oil extraction yield of moringa (Moringa oleifera) seed. Agricultural Sciences Journal, 3(1), 72–78. https://doi.org/10.56520/asj.003.01.070
30. Vergara-Jimenez, M., Almatrafi, M.M., & Fernandez, M.L. (2017). Chemical profile of Moringa oleifera leaves, seeds and pods by gas chromatography-mass spectrometry (GC-MS) analysis. International Journal of Food Properties, 20(1), S1-S12. https://doi.org/10.3390/antiox6040091
31. Waring, R.H., Harris, R.M., & Mitchell, S.C. (2018). Plastic contamination of the food chain: A threat to human health? Maturitas, 115, 64–68. https://doi.org/10.1016/j.maturitas.2018.06.010
32. Wiesner-Kiełczewska, , Zagrodzki, P., Gawalska, A., & Paśko, P. (2025). Chemometric methods: A valuable tool for investigating the interactions between antifungal drugs (including antifungal antibiotics) and food. Antibiotics, 14(1), 70. https://doi.org/10.3390/antibiotics14010070